联系我们 Call Us: 027-8485-6560
  • 急性脊髓损伤(ASCI)小鼠模型 Fig. Mechanical allodynia test by Von Frey filaments
  • 急性脊髓损伤(ASCI)小鼠模型 Fig.Immunofluorescence Detection of MAP-1 in Spinal cord tissue
  • 急性脊髓损伤(ASCI)小鼠模型 产品包装(模拟)
  • 急性脊髓损伤(ASCI)小鼠模型 产品包装(模拟)
  • Certificate 通过ISO 9001、ISO 13485质量体系认证

急性脊髓损伤(ASCI)小鼠模型

Mouse Model for Actue Spinal Cord Injury (ASCI)

  • 编号DSI545Mu01
  • 物种Mus musculus (Mouse,小鼠)
  • 下载 英文说明书 中文说明书
  • 规格 每例
  • 价格 ¥ 780
基础信息
  • 原型物种
  • 来源手术
  • 模式动物品系SPF级ICR小鼠,健康,雄性,8~12W
  • 实验分组实验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组。
  • 实验周期4-6 weeks
  • 建模方法取 ICR 小鼠,戊巴比妥钠麻醉后,采用椎板切除术暴露 T9-T10 处脊髓。然后采用脊髓打击器,于暴露脊髓处施加 90 kilodynes 的力造成挫伤型脊髓损伤,SCI 后连续 10 天每天肌肉注射庆大霉素(8mg/kg)防止术后感染,并每天两次人工膀胱按压挤尿直至恢复自主膀胱活动为止(防止尿潴留)。
    处理一周后进行 BBB 评分评估小鼠后肢运动能力;
    BBB score=0 时,则模型构建成功。将构模成功的小鼠分为两组,每组 8只,于挫伤型 SCI 处理 1week 后,于大鼠尾静脉处进行注射处理(模型组只注射生理盐水,治疗组注射含有受试药物的生理盐水 )。
    SCI 后,16 只小鼠饲养 3week 时,根据SCI后 3 week 结果每组取 3 只效果最显著的小鼠取脊髓进行病理学检测,剩余 10 只小鼠继续饲养并与5week,7week,9week进行BBB 评分和机械触诱发痛检测。SCI后 9week 时所有受损脊髓中心进行冻存或 OCT 包埋。
  • 应用疾病模型
模型评价

1. BBB test
于药物注射后每隔一周进行 BBB test,直至移植后 8 周(即 SCI 后 3week、5week、7week、9week)。药物注射后 2 周(即 SCI 后 3week)共 16 只小鼠进行行为学检测数据,选择变化显著的 3 只小鼠(每组 3 只,即 6 只小鼠)的脊髓组织进行病理学检测。剩余 5 只小鼠(每组 5 只,即 10 只小鼠)依旧隔一周(即 SCI 后 5week、7week、9week)进行 BBB test。分值范围为0-21分,其中0分代表后肢完全失去运动功能,21分代表后肢运动功能基本正常。
2. Mechanical allodynia test (机械触诱发痛检测)
使用 Von Frey 测痛套件,记录缩足的压力(g),2 分钟时间间隔内测量 4 次,剔除最大值和最小值后获取的中间值作为痛阈(g)。
脊髓损伤模型的建立及术后小鼠情况:
所有实验小鼠在打击时均出现痉挛性摆尾,双下肢及躯体回缩扑动,随后双下肢瘫痪,损伤节段脊髓硬膜完整、出血、水肿。所有麻醉后小鼠于术后苏醒,出现双下肢瘫痪,运动、感觉功能丧失,依靠双上肢移动躯体,头颈部活动正常。术后1d,所有小鼠BBB评分均小于1分,活动明显减少,进食、饮水量减少,协助排尿7d后大部分小鼠恢复自主排尿功能。

机械触诱发痛检测:将小鼠置于金属网格的架子上使之适应环境,采用Von Frey丝自足底下方垂直剌激后爪底皮肤表面,能引起阳性缩爪反应所需的最低力度记为缩爪阈值,造模后小鼠的PWTs值较正常小鼠均下降。

组织病理学

3.免疫荧光
药物注射后两周,取受损脊髓组织,石蜡切片后,检测其中 MAP-1 的表达分布。
4.小胶质细胞/ 巨噬细胞检测— 激光共聚焦
药物注射后两周,取受损脊髓组织,石蜡切片后,检测其中 ED1(小胶质细胞/巨噬细胞活化 marker)。

统计学分析

应用SPSS软件进行统计分析,计量资料以均数±标准差(x ±s)表示,采用t检验,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05表示有显

资质许可 动物防疫条件合格证 实验动物生产许可证 实验动物使用许可证
留言板 如果您有任何问题,请留言,我们将最快在24小时内给您回复。 立即留言