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  • 肝缺血(HI)大鼠模型 Fig 1. Image of the 70% rat liver ischemia
  • 肝缺血(HI)大鼠模型 产品包装(模拟)
  • 肝缺血(HI)大鼠模型 产品包装(模拟)
  • Certificate 通过ISO 9001、ISO 13485质量体系认证

肝缺血(HI)大鼠模型

Rat Model for Hepatic Ischemia (HI)

  • 编号DSI527Ra01
  • 物种Rattus norvegicus (Rat,大鼠)
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  • 规格 每例
  • 价格 ¥ 1440
基础信息
  • 原型物种
  • 来源缺血再灌注
  • 模式动物品系SD大鼠,SPF级,健康,雄性,体重:200g~220g
  • 实验分组对照组,模型组,阳性药物组,受试药物组,15只每组
  • 实验周期24hrs, 72hrs
  • 建模方法1.选取体重250g-300g大鼠,行术前12 h禁食,自由饮水。
    2.15%水合氯醛350mg/kg腹腔注射麻醉,麻醉成功后将大鼠平躺在手术台上胶带固定四肢,将大鼠腹部至剑突术区剃毛 ,用 10%碘酒和75%乙醇术区消毒。
    3.取腹正中切口1cm,打开腹腔,小心分离出肝脏左、中叶之肝蒂(左、中叶肝脏供血的门静脉和肝动脉)。
    4. 用无创血管夹夹闭中叶和左叶的门静脉和肝动脉,使约70%的肝脏缺血,以防止发生严重肠系膜静脉淤血。0.5min后,与非阻断的右叶相比,肉眼可见阻断叶明显变白,说明阻断成功,用止血钳夹闭皮肤切口临时关闭腹腔,同时将大鼠放在37℃恒温加热垫上保温。
    5. 完成持续缺血60min后,重新打开腹腔,迅速取出血管夹,恢复缺血肝血流,0.5min左右可见缺血区肝脏由白色逐渐恢复为鲜红色表明再灌注成功,逐层缝合腹腔肌肉和皮肤关闭腹腔,完成手术。待大鼠清醒后放回饲养室饲养,密切关注大鼠的状态及生存状况并做好记录。
    6. 术后分别于再灌注0h、3h、6h、12h、24h及72h处死大鼠,下腔静脉取血1ml,室温静置2h后于4℃3000r离心10分钟提取血清,放入-80冰箱冻存。采用全自动生化分析仪检测血清中ALT(谷丙转氨酶)、AST(天门冬氨酸氨基转移酶)的水平。同时统一取肝左叶组织1.5cm×1cm×0.2cm留作病理标本或分生标本。

    注意事项
    1.分离肝门时用棉签分离,可避免对肝脏的损伤
    2.术前禁食有利于手术进行
    3.阻断血流要一次成功,否则会造成缺血预处理,减轻损伤程度
    4.再灌后用棉签轻轻按压肝脏,有利于血流恢复
    5.取材时镊子不要损伤肝脏
  • 应用疾病模型
模型评价

肝脏缺血损伤评分:
0分:无肝细胞损伤
1分:轻度损伤,特点为细胞质空泡化,病灶核固缩
2分:中度损伤,血窦膨胀,细胞溶质空泡化,细胞边界模糊
3分:中度到重度损伤,凝固性坏死,大量血窦膨胀,红细胞渗出到肝锁,嗜伊红细胞增多,中性白细胞着边(附着于血管壁)
4分:严重坏死,失去肝脏结构,肝索崩解,出血,嗜中性粒细胞渗入

组织病理学

取肝左叶组织1.5cm×1cm×0.2cm于4%多聚甲醛溶液中固定24h后脱水,包埋,进行石蜡切片后行HE染色,tunel染色。作坏死评分。肝小叶结构严重破坏,网状纤维支架塌陷,肝细胞坏死,空泡变样,肝细胞索、肝窦充血肿胀,边界不清,周围有炎性细胞浸润。

标志因子水平

分别检测术后0h、3h、6h、12h、24h及72h大鼠血清中ALT(谷丙转氨酶)、AST(天门冬氨酸氨基转移酶)的水平。

统计学分析

应用SPSS软件进行统计分析,计量资料以均数±标准差(x ±s)表示,采用t检验,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05表示有显

资质许可 动物防疫条件合格证 实验动物生产许可证 实验动物使用许可证
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